ABgene FAQ
お客様からいただくご質問をまとめました。
その他ご質問などございましたら、
製品問い合わせ先ページよりお願いいたします。
QPCR
Q1: どのDNA Polymeraseを使えば良いですか。
標準的なPCR には ThermoPrime Taq DNA Polymerase をおすすめします。Long PCR やエラー率の低いPCR を行う場合は、2 つの酵素を組み合わせた Extensor Hi-Fidelity PCR Enzyme をおすすめします。また、GC リッチな配列を含む場合やDNA テンプレートへの特異性を高めたい場合には、高温活性化型のThermo-Start Taq DNA Polymerase をおすすめします。
Q2: Thermo-Prime Taq DNA Polymerase 用の添付バッファーの特長は何ですか。
ThermoPrime Taq DNA Polymerase にはアンモニウムイオンをベースとしたBuffer IV を添付しています。Buffer IV を用いることによってPCR 産物の収量が高くなります。また、KCl をベースとしたBuffer I や Buffer II もご利用いただけます(I とII の違いは MgCl2 の有無)。KCl バッファーにはPCR の特異性を高める作用があります。
Q3: Thermo-Start Taq DNA Polymeraseは化学修飾ですか、抗体添加タイプですか。
Thermo-Start Taq DNA Polymerase は95℃ で15 分加熱することで活性型になる化学修飾タイプのDNA Polymerase です。一般的に抗体タイプのホットスタートTaq DNA Polymerase は60℃で酵素活性が現れますが、60℃付近ではプライマーの非特異的なアニーリングが完全に解消されず、またプライマーダイマーの存在も無視できません。一方、化学修飾タイプのTaq DNA Polymerase は95℃で活性化されるため、より特異性の高い増幅が得られます。
Q4: GCリッチの鋳型DNAから増幅したい場合にはどの酵素を使えば良いですか。
Thermo-Start Taq DNA Polymerase は95℃ で15 分加熱することで活性型になる化学修飾タイプのDNA Polymerase です。一般的に抗体タイプのホットスタートTaq DNA Polymerase は60℃で酵素活性が現れますが、60℃付近ではプライマーの非特異的なアニーリングが完全に解消されず、またプライマーダイマーの存在も無視できません。一方、化学修飾タイプのTaq DNA Polymerase は95℃で活性化されるため、より特異性の高い増幅が得られます。
Q5: Extensor Hi-FidelityではどのくらいのサイズのDNAを増やすことができますか。
Extensor Hi-Fidelity PCR Enzyme は最大で 20 kb までのDNA を増幅することができます。添付のBuffer 1は12kbまでの増幅に使用し、Buffer 2は12kb以上の断片を増やす場合にご使用ください。
Q6: PCR産物をプラスミドへサブクローニングしたい場合、TAクローニングができますか。
いずれのpolymerase もターミナルトランスフェラーゼ活性(3' 末端付加活性)を持っているのでTA クローニングが可能です。Extensor Hi-Fidelity Enzyme mix には 3' → 5' のエキソヌクレアーゼ活性(校正活性)をもつ酵素が含まれていますが、PCR 産物の大部分はTaq DNA Polymerase により3' 末端にアデニンが付加された状態のため、そのまま TA クローニングに使用できます(Taq DNA Polymerase 単独で反応した場合と比べると若干効率は落ちます)。サブクローニングの際にはPCR 産物を一度精製して、このエキソヌクレアーゼ活性を完全に失活させてください(フェノール抽出によって酵素を完全に失活させることをおすすめします)
Q7: ReddyMixはPCR後の実験に影響しませんか。
ReddyMix に含まれているLoading Dye は制限酵素消化やサブクローニングなどの実験には影響しません。ただし DNA シーケンシング実験ではDye を除去してください。
Q8: 1.1Xまたは2X マスターミックスのどちらを使えば良いでしょうか。
ご使用されるDNA テンプレートやプライマーの濃度によって使い分けてください。いずれのPCR Master Mix でも最終的なPCR 溶液(酵素、ヌクレオチド、バッファー)の組成は同じになるように調製します。 1.1X PCR Master Mix は 45 μl のPCR Master Mix に1 μl ずつのプライマーと3 μl のDNA テンプレートを混ぜて最終的に50 μl にしてください。2X PCR Master Mix では25 μl のPCR Master Mix にDNA テンプレートとプライマーを加えた後、最終的に 50 μl になるように分子生物学グレードの水でメスアップしてください。



